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超滤在生物医药领域的应用

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发表于 2021-7-15 08:15:28 | 只看该作者 回帖奖励 |倒序浏览 |阅读模式
本帖最后由 nanopuretech1 于 2021-7-15 08:25 编辑



2021-07-15   环球过滤分离技术网 nanopuretech1

摘要:切向流过滤(Tangential Flow Filtration,TFF),即超滤,是一种已经被广泛采用的过滤操作方式,它的应用包括澄清过滤、产物浓缩、除热原、除小分子杂质、脱盐和缓冲液置换等等。本文将以超滤为切入点,详细介绍其在生物制药领域的广泛应用。
背景介绍
超滤或切向流过滤是一种介于微滤与纳滤之间的能将溶液进行分离、浓缩、透析的膜分离技术。切向流过滤的概念是相对于常规过滤(Normal Flow Filtration,NFF )而言的,如下图1 所示。常规过滤是指在压力的作用下,液体直接穿过滤膜进入下游,而大的颗粒或分子则被截留在膜的上游或内部,小的颗粒或分子透过膜进入下游。在这种操作方式下,液体的流动方向是垂直于膜表面进入下游的,所以也有人称之为“死端过滤”(Dead End Filtration)。常规过滤的应用包括澄清过滤、除菌过滤和除病毒过滤等等,不是本文讨论的重点。而切向流过滤则是指溶液沿着与膜平行的方向流动,在压力的推动下,小于膜孔的分子透水膜,成为透过液,比膜孔大的分子被截留,成为浓缩液,这种操作方式也有人称之为“错流过滤”(Cross Flow Filtration)。由于切向流在过滤过程中对膜包的表面进行不停的“冲刷”,所以在这种操作模式下有效的缓解了大的颗粒和分子在膜上的堆积,这就使得这种操作模式在很多应用中具有独特的优势。


图 1 常规过滤与切向流过滤示意图

超滤在生物制药有广泛的应用,如在澄清过滤、产物浓缩、脱盐和缓冲液置换等等(图2)。



图2  超滤的应用

下图3为典型切向流过滤系统的示意图,通常包括泵、膜包和夹具、贮罐、连接管件以及阀门和压力表等。



图3 超滤系统示意图
超滤
膜材质的选择
常用的膜材质包括聚醚砜和再生纤维素(表1),这两款膜材质都具有高截留率、高通量、易清洗。
•  聚醚砜具有杰出的PH兼容性,耐酸碱的清洗。
•  再生纤维素亲水性高,蛋白吸附性低,不耐强碱,对清洁和消毒有一定的限制。

表1  膜材特性(PES、RC)




膜孔选择
•  希望目标物质透过膜孔,一般选择膜截留分子量为目标物质分子量的5-10倍或以上。
•  希望目标物质充分截留,一般选择膜截留分子量为目标物质分子量的1/3- 1/5

表2  生物制品膜孔径的选择




超滤清洗
膜包清洗主要是为了去除膜污染物、保持膜性能、减少批间污染。污染物包含微生物、颗粒、蛋白、色素等。所以清洁需要根据污染物的性质、膜材质的耐受性来选择。常见的清洁剂有酸(柠檬酸、乙酸、磷酸等)、碱(氢氧化钠、次氯酸钠)和表面活性剂(SDS、吐温、Triton X100)。表3 为常用的清洁剂和清洁条件,根据膜的耐受性可以调控清洁剂的溶液浓度、处理时间。

表3 常用清洁条件




保存方法
•  短期保存(<1个月):可将将膜包保持在夹具。小于3天的存放使用0.2μm过滤过的超纯水、20%乙醇、0.05N-0.1N的NaOH;小于1个月的存放使用0.1N的NaOH
•  长期存放(>1个月):从夹具中取出膜包,并将其密封到塑料袋中。将约50-100mL的0.05N-0.1N的NaOH储存溶液加入塑料袋中并密封,确保存储溶液完全覆盖膜包,并将密封袋存放在4°C的环境中。
表4  保存条件



市面上比较常用的是Millipore的产品。近年由于新冠疫情的影响,供应链都受到较大的挑战,很多大的制药公司也将目光转到比较出色的国产厂家,例如科百特。科百特主要为全球生命科学和工业领域的客户提供多元化服务,为客户提供先进的解决方案,帮助他们探索、研发和生产生物制品、疫苗、细胞治疗和通用药品。从实验室规模到中试规模在到生产规模,科百特都为客户提供比较完善的整体解决方案。




图 4  膜包及夹具和超滤系统
超滤应用点:
1、生化制品的分离提纯、浓缩、脱盐、脱醇(胸腺肽、肝素钠、细胞色素C等)2、基因工程产品的分离提纯、浓缩、脱盐(干扰素、EPO、TPO、G-CSF等)3、血浆蛋白的分离、浓缩、脱醇(白蛋白、球蛋白、凝血因子等)4、细胞培养产品的分离、浓缩(病毒、抗体等)5、蛋白产品层析前后或冻干前的缓冲液置换6、细胞、菌体及病毒的收集7、发酵液或培养液的澄清,去除菌体和细胞碎片8、小分子产品除热原(如:葡萄糖、抗生素、小肽等)
案例分享
一个切向流过滤的生产工艺由许多参数决定,其中关键的工艺参数有:切向流流量、跨膜压(TMP)、透出液控制、膜面积、透析条件等。这些参数既相互影响又相互制约,要同时达到提高生产效率和节约成本的目的,就必须首先对这些参数进行优化。这些参数通常需要由经验、实验以及具体工艺的需要和各种限制因素结合起来才能确定,因此切向流过滤是一个相当复杂的过程。下面即是根据产品的性质进行相应优化的案例。
慢病毒超滤浓缩
膜包:Consieve®UET 300kDa,0.11m2
结果:浓缩通量56LMH,透析通量42LMH;病毒滴度106→107TU/ml。明显提高了后续的感染PBMC试验效果。




图5 慢病毒超滤浓缩优化
  • 糖苷超滤浓缩透析
膜包:Consieve®UET 10kDa,0.11m2
结果:1.浓缩通量23.6LMH,透析通量23.3LMH;2.透过液有效物质未检出,说明完全截留;3.与透析袋比较:2day→2h



图6  糖苷超滤浓缩优化
  • 酶制剂的浓缩

膜包:Conseive® UET膜包,0.11㎡  10kD
结果:选择进液流量5.3 L/min/m2,根据TMP& flux曲线,最优的TMP 为0.4~0.65bar (图7),target0.5bar。在进液流量5.3 L/min/m2、进液压力1.0bar、TMP 0.5bar的条件下超滤实验,随着浓缩的进行,浓缩倍数升高,膜通量逐步降低,实验的膜包平均通量为35.5LMH (图8)。



破伤风类毒素发酵液超滤浓缩
膜包:Consieve® UET 30kD膜包(0.11m2)。
结果:设置进液流量5.5 L/min/m2,最佳TMP在0.9bar左右(图9)。在进液压力1.4bar,回流压力0.5bar,TMP为0.95bar,进液流量为5.5 L/min/m2,进行超滤浓缩实验(10倍浓缩,图10), 超滤浓缩过程中,随着料液浓缩,膜包通量呈下降趋势,通量从最初的46.4LMH下降到31.2LMH,膜包平均通量为38.4LMH,收率为107%(包含检测误差)。




  • 单抗的超滤浓缩透析

膜包:Conseive® UET膜包,0.11㎡  30kD
结果:该工艺是优化高浓度的单抗溶液。根据VCF vs VCF*Flux曲线计算,料液最合适的洗滤点是浓缩倍数为3.39倍的时候,即浓缩到3.39倍时再进行洗滤的效率是最高的。在超滤渗滤的过程中(6DV),随着洗滤倍数的增加,流速略有衰减。




经过工艺优化后的参数如下表5,放大到500L规模,推荐的浓缩倍数、换液倍数以及再浓缩倍数如下表6。在该优化后的工艺参数下操作,可以在较短的时间内完成超滤渗滤工艺。
表5  优化后的工艺参数表





表6  工艺放大配置表




结束语
以上分析可知,虽然超滤的应用范围非常广,但一定要结合实际情况和处理范围进行相应的优化。另外,可以看出超滤技术在不断满足生物制药领域的众多需求的基础上,也接受各种挑战,例如在获得高通量的条件下,简化处理过程,缩短工艺时间。

来源于:生物制品圈,侵权告删 www.guolvfenlitech.com




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